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細胞培養常用的消化液

更新時間:2014-02-28 點擊次數:940次

上海橋星生物

   

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一、胰蛋白酶(trypsin)溶液

    胰蛋白酶是白色或淡黃色粉末,低溫干燥保存。主要作用是使細胞間的蛋白質水解,使細胞離散。其活性以其消化酪蛋白的能力進行測定。常用1:250(1:500)方法表示,即1份胰蛋白酶可以消化250份(或500份)酪蛋白。

胰蛋白酶對細胞的分離作用與細胞的類型和細胞的性質關系密切。不同細胞系對胰蛋白酶溶液的濃度、溫度和作用時間等的要求也不相同。

 

    無鈣鎂離子的平衡鹽溶液(常用于配制胰蛋白酶溶液或用于洗滌細胞)

    NaCl    8g

    KCl    0.20g

    KH2PO4    0.02g

    Na2HPO4    0.073g

    葡萄糖    2.00g

    酚紅    0.02g

    溶于1000ml水中

    染色體的G帶核型實驗中胰蛋白酶用生理鹽水配制。

   

二、EDTA溶液

    又稱versene,一般用其鈉鹽,因可溶性較好。有些組織需要Ca2+、Mg2+來保持其完整性,用EDTA來排除這些離子,可使細胞之間裂解,以分散細胞。其作用比胰蛋白酶緩和。使用濃度為0.02%,以無鈣、鎂的平衡鹽溶液配制。

    實驗室內常將胰蛋白酶和EDTA聯合使用。可提高消化效率,細胞分散情況改善。

EDTA不能被血清抑制,所以消化后必須*清洗。

EDTA對成纖維細胞作用差。

 

 

三、膠原酶溶液

    1.用Hank's液配制成2000U/ml

    2.36.5度攪拌溶解1h,4度過YE

    3.濾過消毒

    4.分裝成等份使用(1-2周內)

    5.長時間貯存在-20度

 

四、貼壁細胞——消化法——細胞懸液

    1.吸除或倒掉瓶內培養液。

    2.以25cm2培養瓶為例,向瓶內加入1ml消化液(胰蛋白酶或與EDTA混合液)輕輕搖動培養瓶,使消化液流遍所有細胞表面,然后吸掉或倒掉消化液后再加1ml消化液,輕輕搖動后再倒掉大部分消化液,僅留少許進行消化。也可不采用上述步驟,直接加1-2ml消化液進行消化,但要注意盡量減少消化液的剩余量,因為消化液過多對細胞有損傷,同時也需要較多的含血清培養液去中和。

    3.消化在37度或室溫25度環境下進行。消化2-5分鐘后把培養瓶放置在顯微鏡下進行觀察,發現胞質回縮、細胞間隙增大后,應立即終止消化。

    4.如僅用胰蛋白酶可直接加含血清的培養液,終止消化。

       如用EDTA消化,需加Hank's液數毫升,輕輕轉動培養瓶把殘留EDTA消化液沖掉,然后再加培養液,這個操作過程要十分小心,如果細胞已經脫壁則消化液不能夠倒掉,以免丟失細胞,要加入Hank's液或培養液終止消化,吹打收集細胞懸液,離心漂洗去除EDTA。

    5.用彎頭吸管,吸取瓶內培養液,反復吹打瓶壁細胞,吹打過程要順序進行,從培養瓶底部一邊開始到另一邊結束,以確保所有底部都被吹到。吹打時動作要輕柔不要用力過猛,同時盡量不要出現泡沫,這些都對細胞有損傷。細胞脫離瓶壁后形成細胞懸液。


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